Imagerie 3D en profondeur
L’un des challenges en imagerie biologique est de visualiser en trois dimensions et en profondeur des structures biologiques et des organismes vivants. Le CERT dispose des instruments et de l’expertise permettant de réaliser ce type d’analyse. L’un d’entre eux, le SPIM, fruit des recherches du CERT et d’autres laboratoires toulousains, demeure un outil unique en plateforme.
SPIM
Un nouveau microscope basé sur une excitation à feuille de lumière, le SPIM (Selective Plane Illumination Microscope), permettant non seulement un sectionnement optique rapide, en 3D et en profondeur pour le vivant et offrant des possibilités d’acquisition en multi-vues, ouvre de nouvelles perspectives dans l’observation biologique. Cet équipement unique est aujourd’hui mis à la disposition de toute la communauté scientifique.
Specifications
- 5X, 10X, 20X objectives lenses
- Laser 488, 532, 594nm
- CCD camera
- CO2 and temperature controlled
- Q-Switch Laser 532nm
Applications
- 3D imaging in depth
- Live dynamic analysis
- Photomanipulation
MacroSPIM
Le MacroSPIM, macroscope basé sur une excitation à feuille de lumière, permet de visualiser après transparisation des tissus et des organes entiers par sectionnement optique rapide, en 3D et en profondeur. Il offre des possibilités d’acquisition en multivues, ouvre de nouvelles perspectives dans l’observation biologique. Cet équipement unique basé sur un développement mené à Barcelone (IRB), est aujourd’hui, au sein du CERT, mis à la disposition de toute la communauté scientifique.
Specifications
- 2X, 5X objective lenses
- 1X to 8X zoom
- Laser 405,488, 561, 642nm
- CMOS camera
Applications
- 3D imaging in depth
- Tissue imaging
Imagerie spectrale
Biphoton
Specifications
AxioExaminer (statif droit) LSM 880 (Zeiss)
Distance maximale sous l’objectif :11 cm
Système de detection spectrale Quasar avec 2PMTs latéraux et 1 détecteur spectral central GaAsP composé de 32 détecteurs haute sensibilité)
Laser 458, 488,514,561 et 633
Laser Ti/Sa Chameleon (Coherent)
Applications
Live imaging (explants, modèles animaux)
Acquisition jusqu’à 10 canaux ponctuel don’t 8 GaAsP
Acquisition spectrale simultanée de 391 à 749 nm
Libre parametrage de la fenêtre d’emission de fluorescence.
Acquisition confocale
SGH
Imagerie en temps réel
Widefield live imaging microscope 2- AxioObserver Zeiss
La Vidéomicroscopie permet un suivi dynamique à long terme sur des échantillons « vivants » en 2D.
Specifications
- 5X, 10X, 20X, 40X, 63X objectives lenses
- DAPI, GFP, Cy3 and Cy5 Filter sets
- CCD camera
- CO2 and temperature controlled
- ApoTome.2 module
Applications
- Live dynamic analysis
Autres équipements
- Cryostat Leica CM1950 – Coupes fines à congélation – Faculté de chirurgie dentaire
- Microtome HM340E – Coupes fines en paraffine – Faculté de chirurgie dentaire
- Vibroslice Campden 5100mz – Coupes épaisses en agarose – Incere
- Vibroslice Campden MA752 – Coupes épaisses en agarose – Faculté de chirurgie dentaire
Cytométrie en flux
Fortessa X20 - BD Biosciences
Le Fortessa X20 est équipé de 5 lasers : 488nm blue, 405nm violet, 355nm UV, 640nm red, 561nm yellow-green, pouvant lire 19 paramètres. Le Fortessa présent sur la plateforme est également équipé d’un passeur de plaques 96 puits. Le plateau est équipé des logiciels d’analyses DIVA, Flowlogic et Kaluza, utilisables sur place sous conditions de réservation.
MACSQuant - Miltenyi
Le MACSQuant est équipé de 3 lasers : 405nm, 488nm et 640nm, pouvant ainsi lire 10 paramètres. Ce cytomètre est également équipé d’un passeur de plaque, d’un module de marquage et de dilution automatique. Il permet de standardiser des expériences.
Tri cellulaire
ARIA Fusion - BD Biosciences
Le trieur présent sur le plateau, sous ambiance stérile, est un ARIA Fusion (BD Biosciences) équipé de 4 lasers : 561nm yellow-green, 407nm violet, 633nm red, 488nm blue, pouvant lire 18 paramètres.
Le trieur présent sur le plateau est équipé des accessoires suivant :
- Tri en 4 voies
- Tri en tubes de 1.5ml, 2ml, 5ml, 15ml
- Buse de 70µm, 85µm, 100µm
- Module de réfrigération en entrée et en sortie de tri.
Cytométrie en images
Image Stream X Mark 2 - Merck Luminex
Le plateau dispose d’un cytomètre en image : Image Stream X Mark II (Merck-Luminex). Cet appareil est équipé de 3 objectifs (20x, 40x et 60x, de 3 lasers (405nm, 488nm et 642nm) et d’une caméra et peut donc lire 6 paramètres simultanément.
Les fichiers d’images constitués de dizaines de milliers d’images de cellules peuvent être analysés de manière routinière en utilisant le logiciel IDEAS : analyse jusqu’à 500 paramètres morphométriques et photométriques pour chaque image de cellule utilisant des algorithmes brevetés. Le logiciel est présent sur le plateau est utilisable sous conditions de réservation.
Mécanobiologie-AFM
NanoWizard® II de JPK (Life Science Version)
Couplé à une microscope inversé à fluorescence Zeiss
Bioscope Catalyst de Bruker
Couplé à une microscope inversé à fluorescence Nikon.
- Couplages AFM-Photonique originaux
- Spectroscopie de force à l’air et en liquide avec pointes fonctionnalisées par chimie de surface.
- Topographie en mode contact, tapping et imagerie quantitative à l’air et en liquide
BioFab
Fabrication 3D : ZORTRAX INKSPIRE
- Printing Technology: UV LCD* – projecting a shape of a layer on the underside of the tank with liquid resin and curing the layer with a UV lamp
- Layer Thickness: 25, 50, 100 microns
- Pixel size: 50 microns (0.05 mm)
- Build Volume: 132 x 74 x 175 mm [2.9 x 5.2 x 6.9 in]
- Supported Formats: .cws, .zcodex, .sl1, .zip
- Operating Temperature: 20 – 30˚ C
- Software Bundle: Z-SUITE 2®
- Supported File Types: .stl, .obj, .dxf, .3mf, .zcodex
Lithographie 2D
Machine de lithographie douce Gesim (Micro-Contact Printing – µCP)
Soft UV-NIL (Encrage, Séchage, Dépôt de molécules, Insolation UV)
Plasma oxygene micro-ondes DIENER Pico & étuve MEMMERT
Microscope droit avec champ sombre
Spin coater LAURELL WS-650-SZ
Culture biologique
2 PSM avec filtre à charbon pour solvants
2 Incubateurs et 1 réacteur
Logiciels de traitement et d’analyse
Logiciels de traitement et d’analyse de données biologiques
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Spécifications |
Applications |
| 3 licences Imaris (Bitplane) | 3D & 4D modeling, 2D & 3D tracking |
| 2 licences Amira (ThermoFisher) | 3D modeling, 3D & 4D image processing |
| 1 licence Vision 4D (Arivis) | 3D & 4D modeling, pixel & object classification |
| Serveur de licences Matlab (Mathworks) | Pixel & Object classification, workflow & automatic image processing, GUI implementation, database implementation |
| 3 licences NIS elements (Nikon) | 3D & 4D modeling, 2D & 3D tracking, Volume analysis, High content analysis |
| Logiciels open-source Ilastik | Pixel & Object classification |
| Logiciels open-source Fiji | 2D, 3D & 4D image processing, Pixel & Object classification, 2D & 3D tracking, automatic image processing |
| Logiciel open-source Python | Pixel & Object classification, GUI implementation, database implementation |
| Licences Graphpad Prism | Statistical analysis of biological data |
| 3 licences Flowlogic | Flow Cytometry analysis |
| 5 licences Kaluza | Flow Cytometry analysis |
| 1 licence INSPIRE | Imaging Flow Cytometry analysis |
Logiciels d’analyse High Content Screening
Spécifications
- Une licence HCS Studio (ThermoFisher)
- 2 licences Harmony (Operetta)
- Système d’exploitation Windows 7 (64 bits)
Applications
- Real time acquisition and visualization of 2D, 3D et 4D images
- Automated high content analysis (Apoptosis, Cell cycle, cell proliferation, Cell viability, Neurite, outgrowth, protein synthesis)
- Visual and quantitative analysis of 2D, 3D and 4D cell models
Stations d’analyse
2 stations d’analyse Dell Precision T7910
Spécifications
- Processeur Intel Xeon CPU E5-2680 V4
- Carte graphique NVIDIA Quadro K6000 12GoApplications
- 256 Go de RAM
- Système d’exploitation Windows 10 (64 bits)
Applications
- Modélisation, visualisation d’images
- Analyse d’images
- Traitement d’images
- Calculs GPU & CPU
Quantification d’échantillons
NanoDrop 2000 ® (Thermofisher Scientific)
- Quantification et contrôle de pureté par mesure d’absorbance
- Mesure sur le spectre UV-visible (190-840 nm)
- Lecture sur microvolumes (1-2 µl)
Analyse transcriptomique
GeneAtlas system microarray – Affymetrix
FX96 Touch Real-Time PCR System- Biorad
StepOnePlus™ Système de PCR en temps réel – Biorad
Système LightCycler® 480 plateforme PCR – Biorad
Fluxomique
Module de fluxomique in vivo
Spécifications
- 2 Tables d’anesthésie gazeuse TEM SEGA
- Dispositif de perfusion sur souris vigiles (pousse-seringues, portiques, swivels)
- Armoire à thermoneutralité
Applications
- Traçage isotopique in vivo (modèles de perfusion, d’injection intrapéritonéale, …)
- Collecte de biofluides, tissus, organes
Module de fluxomique in vitro
Spécifications
- Système de quenching du métabolisme in vitro
- Enceinte à atmosphère contrôlée en oxygène (X-Vivo)
Applications
- Traçage isotopique in vitro (modèles cellulaires 2D et 3D)
- Collecte de l’endométabolome et de l’exométabolome
Jacques Rouquette
- assure le conseil dans l’élaboration des panels multi-couleurs,
- assure la formation des utilisateurs,
- assiste les utilisateurs dans l’analyse et l’interprétation de leurs résultats,
- accompagne les utilisateurs dans la mise en place de projet de recherche et développement, sous forme de collaboration.
Ses travaux sur les cellules leucémiques résistantes à la chimiothérapie, ont été distingués par le prix Hélène Stark de la meilleure communication orale, le second prix Kerner de vulgarisation scientifique et le prix coup de cœur des donateurs. « L’application aux patients est encore loin, mais avec ces travaux j’apporte l’espoir d’un meilleur ciblage des cellules cancéreuses et je l’espère, de nouveaux traitements à horizon de 10 ou 15 ans », avance Thomas Farge.